細胞簡介：

產(chǎn)品名稱 小鼠肺小動脈內(nèi)皮細胞

組織來源 肺小動脈組織

產(chǎn)品規(guī)格 5×10^5Cells/T25

細胞簡介 小鼠肺小動脈內(nèi)皮細胞分離自肺小動脈組織；肺動脈干是短而粗的動脈，自右心室的動脈圓錐起始，向左后上方斜升，先在升主動脈根部的前面，繼而至其左側(cè)，至主動脈弓的下方，約在第5胸椎高度，分為左、右肺動脈。左肺動脈較短，橫行向左，經(jīng)左主支氣管前方至左肺門，分兩支進入左肺的上、下葉。右肺動脈較長，橫行向右，經(jīng)主動脈升部和上腔靜脈的后方達右肺門，分3支進入右肺上、中、下葉。左、右肺動脈的各分支在肺實質(zhì)內(nèi)又反復(fù)分支，與支氣管的分支伴行，后達肺泡壁，形成稠密的毛細血管網(wǎng)。肺動脈輸送的是含二氧化碳較多的靜脈血。在肺動脈干分叉處稍左側(cè)與主動脈弓下緣之間有結(jié)締組織索，稱動脈韌帶。管徑在0.3-1 mm之間，為小動脈（small-artery），小動脈包括粗細不等的幾級分支，也屬肌性動脈。較大的小動脈，內(nèi)膜有明顯的內(nèi)彈性膜，中膜有幾層平滑肌，外膜厚度與中膜相近，般沒有外彈性膜。口徑在1 mm以下的動脈，管壁有完整的平滑肌層及少量的彈性纖和膠質(zhì)纖。小動脈是決定周圍循環(huán)阻力大小的主要因素，也是調(diào)節(jié)微循環(huán)灌注量的“總開關(guān)"。典型的小動脈，其管壁的厚度與管徑相比約為1：2。中膜的肌層相對比其他動脈為厚，當(dāng)平滑肌在神經(jīng)支配下強力收縮時，其管腔可以閉塞，而使血液不能流入它所分布的毛細血管內(nèi)，從而增加了周圍血液循環(huán)的阻力。如果有許多小動脈同時收縮，可使血壓顯著上升。反之，當(dāng)小動脈的平滑肌舒張時，則可使大量的血液流入毛細血管，外周阻力明顯下降，血壓降低。終末小動脈（terminal arteri-ole）的口徑為20-30 μm；后小動脈（metar-teriole），又稱毛細血管前小動脈（precapil-lary arteriole）的口徑為12-15 μm。管壁內(nèi)均有較稀疏的平滑肌，在毛細血管前小動脈分支的起始部分，管壁平滑肌成分增厚，叫做毛細血管前括約肌（precapillary sphinc-ter），其收縮或舒張，可調(diào)節(jié)真毛細血管的血流量，是調(diào)節(jié)微循環(huán)灌注量的“分開關(guān)"。支配小動脈平滑肌的交感神經(jīng)纖，可延伸到終末小動脈和后小動脈的平滑肌細胞。在毛細血管前括約肌上交感神經(jīng)纖特別豐富。肺小動脈內(nèi)皮細胞呈單層多角形鋪路石狀分布，該細胞在持血管內(nèi)外的動態(tài)平衡、合成和分泌細胞因子和介質(zhì)、持和纖溶的動態(tài)平衡中起重要作用。

方法簡介 實驗室分離的小鼠肺小動脈內(nèi)皮細胞采用-膠原酶聯(lián)合消化法結(jié)合差速貼壁法、并通過內(nèi)皮細胞專用培養(yǎng)基培養(yǎng)篩選制備而來，細胞總量約為5×10? cells/瓶。

質(zhì)量檢測 實驗室分離的小鼠肺小動脈內(nèi)皮細胞經(jīng)CD31免疫熒光鑒定，純度可達90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。

產(chǎn)品信息：

培養(yǎng)信息：

自備試劑： 0.25% 、多聚-L-賴溶液（1×）或多聚-L-賴溶液（10×）或明膠包被液（1 mg/mL） 、PBS 、培養(yǎng)基

包被條件： PLL（0.1 mg/mL）或明膠（0.1%）

培養(yǎng)基： 小鼠肺小動脈內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基(含F(xiàn)BS、生長添加劑、Penicillin、Streptomycin等)

換液頻率： 每2-3天換液次

生長特性： 貼壁

細胞形態(tài)： 內(nèi)皮細胞樣

傳代比例： 1:2

傳代特性： 可傳1-3代

消化液： 0.25%

凍存步驟：

凍存前準(zhǔn)備?

確保細胞處于對數(shù)生長期，密度達80%-90%?。

配制凍存液：推薦50%基礎(chǔ)培養(yǎng)基+40%FBS+10%DMSO?。

?細胞處理?

棄去培養(yǎng)上清，用PBS潤洗1-2次?。

加入消化后，用含血清的培養(yǎng)基終止消化。

?凍存操作?

離心（1000RPM，3-4分鐘）后棄上清，用凍存液重懸細胞?。

分裝至凍存管（每管1mL，細胞數(shù)100-400萬）?。

4℃靜置10分鐘，-20℃ 2小時，-80℃過夜后轉(zhuǎn)入液氮?。

公司正在出售的產(chǎn)品：

操作實驗步驟：

1. 原代細胞分離

?組織獲取?：采用成年SD大鼠，快速取出海馬或脊髓組織，置于低溫人工腦脊液（0-4℃）中保存?。

?消化與離心?：使用木瓜蛋白酶消化組織，通過Optiprep不連續(xù)梯度離心，收集組織細胞密集帶?。

?細胞培養(yǎng)?：將細胞懸液接種于含B27添加劑和堿性成纖維細胞生長因子2（FGF-2）的培養(yǎng)基中，置于37℃、5% CO2孵箱中培養(yǎng)?。

2. 細胞純化

?差速貼壁法?：通過搖床分離（200r/min去除小膠質(zhì)細胞，280r/min收集少突前體細胞）?。

?免疫磁珠分選?：利用NG2抗體標(biāo)記后通過磁珠分選，提高純度?。

3. 細胞傳代與凍存

?傳代?：使用含EDTA和DNase I的消化液處理細胞，按1:3比例傳代?。

?凍存?：將細胞重懸于凍存液（含10% DMSO和90%胎牛血清），程序降溫后保存于液氮中?。

4. 功能驗證

?免疫熒光染色?：檢測NG2、GFAP等標(biāo)志物表達，確認細胞純度?。

?電生理記錄?：通過膜片鉗技術(shù)檢測細胞電特性（如鈉電流）。